Поделитесь рецептом буффера для лизиса клеток
Поделитесь рецептом буффера для лизиса клеток
Приветствую вас, коллеги.
Столкнулась со следующей проблемой, начала делать эксперименты на пролиферацию клеток при помощи окрашивания Кристаллическим фиолетовым, но после всех процедур по протоколу не могу растворить клетки для того, чтобы вытащить из них тот самый краситель.
Гугл говорит, что это 1% раствор SDS, что представляет собой ничто иное как додецил сульфат натрия. Послушав гугл, я, не долго думая, навела такой раствор. Однако, ничего не растворилось. Если копать глубже, можно найти на различных ресурсах множество рецептов, в состав которых, помимо SDS входит Трис и соли. Но нет никакой однозначности в концентрациях.
Прошу помощи у вас, может кто-то имел счастье сталкиваться с подобным.
Столкнулась со следующей проблемой, начала делать эксперименты на пролиферацию клеток при помощи окрашивания Кристаллическим фиолетовым, но после всех процедур по протоколу не могу растворить клетки для того, чтобы вытащить из них тот самый краситель.
Гугл говорит, что это 1% раствор SDS, что представляет собой ничто иное как додецил сульфат натрия. Послушав гугл, я, не долго думая, навела такой раствор. Однако, ничего не растворилось. Если копать глубже, можно найти на различных ресурсах множество рецептов, в состав которых, помимо SDS входит Трис и соли. Но нет никакой однозначности в концентрациях.
Прошу помощи у вас, может кто-то имел счастье сталкиваться с подобным.
Re: Поделитесь рецептом буффера для лизиса клеток
Протокол окраски кристал виолетом выложите. Да! И клетки какие?
-
- Сообщения: 9447
- Зарегистрирован: Вт дек 21, 2004 11:42 am
Re: Поделитесь рецептом буффера для лизиса клеток
Просто из любопытства, а что такое "эксперименты на пролиферацию клеток"? Просто рост культуры? Красить для выявления мёртвых? Краситель потом вытаскивать для фотометрии?
Re: Поделитесь рецептом буффера для лизиса клеток
Протокол вполне стандартный, честно говоря, других и не видела в интернете.
1. Фиксация клеток 4% формальдегидом 10 минут
2. Промывание PBS 3 раза
3. Окрашивание Кристал фиолетовым 0,5% в MeON/H2O 20/80 10 минут
4. Обильное промывание водой
5. Сушка 5-12 часов
6. Добавление детергента
7. Измерение поглощения при 570 нм
клеточные культуры HeLa и CHO
Re: Поделитесь рецептом буффера для лизиса клеток
Да, фотометрия.Polychemist писал(а): ↑Чт апр 19, 2018 6:59 amПросто из любопытства, а что такое "эксперименты на пролиферацию клеток"? Просто рост культуры? Красить для выявления мёртвых? Краситель потом вытаскивать для фотометрии?
И нет, это зависимость количества клеток от концентрации вещества.
Re: Поделитесь рецептом буффера для лизиса клеток
А зачем клетки фиксировать формалином? После формалина их никакой SDS не возьмет. Клетки суспензионные?
Вот CSHL рекомендуют клетки не фиксировать, а краситель экстрагировать чистым метанолом, а не SDSом.
Вот CSHL рекомендуют клетки не фиксировать, а краситель экстрагировать чистым метанолом, а не SDSом.
У вас нет необходимых прав для просмотра вложений в этом сообщении.
Re: Поделитесь рецептом буффера для лизиса клеток
Там нет лизиса клеток. После формалина никакой СДС ничего не лизирует, он нужен для отдирания кристаллвиолета от белков.
И, собственно, в чем проблема? Никакого прироста окраски не видно?
И, собственно, в чем проблема? Никакого прироста окраски не видно?
Re: Поделитесь рецептом буффера для лизиса клеток
В том и дело, что ничего не происходит. Раствор прозрачный, клетки фиолетовые.
Я нашла в лаборатории лизис буффер от какого-то набора, он оказался вполне рабочим, но его волшебный состав это тайна за семью печатями, а количество тает на глазах.. Знаю только то, что на банке написано - KDalert Lysis Buffer.
Я тут еще попробовала поэксперементировать, добавила к СДС Трис и довела pH до 8, стало получше, но поглощение все равно не дотягивает до этого самого лизис буффера (если сравнивать один и тот же 96-луночный планшет).
Re: Поделитесь рецептом буффера для лизиса клеток
Попробуйте так
https://www.mediasphera.ru/issues/vestn ... 65X2015057
Колориметрический метод с использованием генцианвиолета
Степень пролиферации определяется по оптической плотности красителя генцианового фиолетового, связавшегося с клеточными белками и экстрагированного из клеток через N суток культивирования. Влияние тестируемых препаратов на пролиферацию определяли на клетках линии СНО-К1, нормальных ФК человека и клетках постоянной трансформированной клеточной линии Clone 1−5С-4. Клетки высевали в 96-луночные планшеты из расчета 500 клеток на лунку в 200 мкл соответствующей питательной среды с добавлением 10% FBS («HyClone», США). Для клеток линии СНО-К1 использовали среду F12 («Биолот», Россия), для ФК — DMEM/F12 («Биолот», Россия), для клеток линии Clone 1−5С-4 — Игла MEM («Биолот», Россия). Тестируемые АБП добавляли в питательные среды в момент посева клеток. Контролем служили клетки линий CHO-К1, Clone 1−5С-4 и ФК, культивируемые в стандартных условиях: при 37 °C в СО2-инкубаторе в атмосфере 5% СО2. Срок культивирования — 5 сут. На 5-е сутки культивирования клетки фиксировали в 70% растворе этанола и окрашивали 0,1% раствором генцианового фиолетового. После этого экстрагировали краситель из клеток, добавив в лунки по 100 мкл 7% уксусной кислоты. Количество клеток, выросших за время культивирования, определяли методом фотоколориметрического анализа с помощью анализатора Fluorofot («Charity», Россия) по оптической плотности красителя (генцианового фиолетового), связанного с клеточными белками. Измерения проводили при длине волны 570 нм. Полученные данные обрабатывали с помощью компьютерной программы MS Excel. Различия считали статистически достоверными при уровне значимости p<0,05.
https://www.mediasphera.ru/issues/vestn ... 65X2015057
Колориметрический метод с использованием генцианвиолета
Степень пролиферации определяется по оптической плотности красителя генцианового фиолетового, связавшегося с клеточными белками и экстрагированного из клеток через N суток культивирования. Влияние тестируемых препаратов на пролиферацию определяли на клетках линии СНО-К1, нормальных ФК человека и клетках постоянной трансформированной клеточной линии Clone 1−5С-4. Клетки высевали в 96-луночные планшеты из расчета 500 клеток на лунку в 200 мкл соответствующей питательной среды с добавлением 10% FBS («HyClone», США). Для клеток линии СНО-К1 использовали среду F12 («Биолот», Россия), для ФК — DMEM/F12 («Биолот», Россия), для клеток линии Clone 1−5С-4 — Игла MEM («Биолот», Россия). Тестируемые АБП добавляли в питательные среды в момент посева клеток. Контролем служили клетки линий CHO-К1, Clone 1−5С-4 и ФК, культивируемые в стандартных условиях: при 37 °C в СО2-инкубаторе в атмосфере 5% СО2. Срок культивирования — 5 сут. На 5-е сутки культивирования клетки фиксировали в 70% растворе этанола и окрашивали 0,1% раствором генцианового фиолетового. После этого экстрагировали краситель из клеток, добавив в лунки по 100 мкл 7% уксусной кислоты. Количество клеток, выросших за время культивирования, определяли методом фотоколориметрического анализа с помощью анализатора Fluorofot («Charity», Россия) по оптической плотности красителя (генцианового фиолетового), связанного с клеточными белками. Измерения проводили при длине волны 570 нм. Полученные данные обрабатывали с помощью компьютерной программы MS Excel. Различия считали статистически достоверными при уровне значимости p<0,05.
Кто сейчас на конференции
Сейчас этот форум просматривают: Google [Bot] и 14 гостей